Андрей Смирнов
Время чтения: ~19 мин.
Просмотров: 0

Биологическая проба при переливании

Техника обезболивания и вскрытия сухожильного панариция.

Сухожильный
панариций (гнойный
тендовагинит) – это острый тендовагинит
глубоких сгибателей пальцев.

При
локализации гнойного очага на ногте­вой
или средней фалангах пальца применяют
анестезию по Оберсту-Лукашевичу. Этот
вид анестезии обеспечивает обескровливание
и полный обезболивающий эффект в течении
всей операции.

Оснащение:
резиновый жгут или жгут-тесемка, 5
граммовый шприц с инъекционной иглой
для внутримышечной инъекции, анестетик
(р-р ново­каина 1,0%-2,0%, реже тримикаина
или лидокаина), спирт, йод для обработ­ки
кожи.

Подготовка:
больного укладывают на операционный
стол, руку помещают на подставку,
тщательный туалет и асептическая
обработка кисти.

Техника:
Вкол иглы выполнить ниже жгута на
тыльно-боковой поверхности основной
фаланги пальца и с одновременной
инъекцией анестети­ка подвинуть ее
к ладонно-боковой поверхности, куда
ввести 5 мл 1,0%-2,0% р-ра новокаина или
лидокаина. Аналогичную манипуляцию
выполнить с другой стороны фаланги
пальца. Этот вид анестезии обеспечивает
блокаду тыльного (2 веточки) и ладонного
нервов (2 веточки) соответствующей
стороны пальца. Анестезия наступает
через 5-10 минут.

Осложнения:
длительный вазоконстрикторный или
гидравлический турникет чреват
опасностью некроза пальцев.

При
распространении процесса проксимальнее
показана блокада соответствующих нервов
в нижней трети предплечья или анестезия
по Усольцевой (новокаиновая инфильтрация
межпястных промежутков).

Так
как сухожильный панариций – это одна
из форм глубоких панарициев, то лечение
необходимо проводить в условиях
стационара.

Цели
лечения: полное и стойкое купирование
воспалительных явлений при сведении к
минимуму функ­циональных и эстетических
негативных последствий.

Показания:
диагноз острого гнойного заболевания
пальца — абсо­лютное показание к
оперативному хирургическому лечению.
Любые попытки консервативного лечения
чреваты риском хронизации процесса и
его распространения на глубжележащие
структуры.

Сухожильный
панариций требует экстренного
оперативно­го вмешательства, так как
сдавление сухожилия экссудатом быстро
приводит к некрозу нежных сухожильных
волокон. Тактика оперативного вмешательства
при сухожильном панариции зависит от
состояния прилежащей к сухожильному
вла­галищу подкожной клетчатки.

При
интактной клетчатке (в случае развития
тендовагинита после укола непо­средственно
в сухожильное влагалище) оперативное
пособие ограничивают раз­резами и
вскрытием сухожильного влагалища в
дистальном (на средней фаланге) и
проксимальном (в проекции головки
соответствующей пястной кости) отделах.
После эвакуации экссудата и промывания
влагалища растворами антисептиков его
полость дренируют перфорированным
микроирригатором на всю длину,
а
кожные края раны ушивают атравматической
нитью 4/0-5/0.

В
случае когда подкожная клетчатка также
вовлечена в гнойно-деструктив­ный
процесс, производят продольный разрез
по боковой поверхности пальца с
дугообразным продолжением на ладонь в
проекции «слепого мешка» влагалища
сухожилий. Кожно-подкожный лоскут
отпрепаровывают от влагалища, которое,
как правило, бывает частично или полностью
некротизировано, с сохранением ладонных
сосудисто-нервных пучков и выполняют
тщательную некрэктомию в подкожной
клетчатке, иссекают нежизнеспособные
участки сухожильного влага­лища и
некротизированные волокна сухожилия.
Полностью сухожилие иссекают только
при явном его некрозе, когда оно
представлено бесструктурной массой.
После наложения дренажно-промывной
системы рану заполняют марлевыми
полосками с мазью на водорастворимой
основе. Закрытие раны тем или иным
способом возможно только после купирования
острых воспалительных явлений и при
уверенности в жизнеспособности сухожилий.

В
настоящее время в зарубежной литературе
описывается новая методика оперативного
вмешательства при сухожильном панариции.
При данной методике дре­нирование
сухожильного влагалища осуществляется
путем постановки над сухожи­лием
тонкого катетера, один конец которого
выведен через верхний край V-образного
разреза у линии дистального межфалангового
сустава, а другой на ладони — в проек­ции
головки пястной кости. Помимо дренирования,
катетер служит для промывания и орошения
сухожильного влагалища антисептическими
и антибактери­альными препаратами в
течение 24-48 ч. Использование подобной
методики с после­дующей физиотерапией
имеет обычно хорошие функциональные
результаты.

Определение ГК донора и реципиента

Вначале медицинский работник проводит определение ГК пациента по антигенам группы AB0. Самыми распространенными являются два метода – определение ГК при помощи стандартных изогемагглютинирующих сывороток и с использованием цоликлонов.

Методика проведения проб с использованием стандартных сывороток и планшеток

При использовании изогемагглютинирующих сывороток применяются стандартные сыворотки и специальные белые гладкие эмалированные тарелки со смачиваемой структурой, размеченные по 4 группам соответственно.

Порядок действий врача следующий:

  1. Врач указывает на тарелке ФИО пациента.
  2. Капает по 1 капле сывороток 0, А и В, причем используется 2 серии сывороток (получается 6 капель).
  3. Берет кровь у реципиента (капиллярную или венозную).
  4. Полученную каплю крови помещает в центр тарелки и смешивает отдельно с каждым образцом сыворотки (причем объем сыворотки нужно брать в 10 раз больше, чем объем капли крови).
  5. Перемешивает каждую пару сыворотка-кровь отдельной палочкой. Агглютинация начинается через 10-30 сек.
  6. В капли, где наблюдается агглютинация, добавляет по 1 капле физраствора и оценивает результаты.

Цоликлоны, использующиеся при определении групп крови

Также возможны постановки проб с цоликлонами (анти-А и анти-Б). Процедура определения ГК будет похожа на описанную выше.

Отсутствие агглютинации с цоликлоном будет также означать отсутствие однобуквенного агглютинина на эритроците. Так, кровь III группы будет давать агглютинацию только с анти-В цоликлоном.

При проверке резус-фактора в медицине применяется так называемый ускоренный метод со стандартным универсальным реагентом .

Для этого в цетрифужную пробирку объемом не более 10 мл капают 1 каплю реагента (универсальной антирезусной сыворотки четвертой группы, с 33% декстраном — полимерным углеводом) и капают туда 1 каплю крови пациента. Затем круговым движением смешивают и разносят смесь по стенкам пробирки, затем ждут 3 минуты. На следующем этапе добавляют в емкость 2-3 мл физраствора и переворачивают емкость 2-3 раза, избегая взбалтывания. При наличии видимых лепестков агглютинации делают вывод о том, что резус-фактор положительный.

Кровь донора обязательно маркируется

Группа крови донора обычно определяется заранее, и на пакете с кровью должна быть нанесена соответствующая маркировка. Так, II группа обозначается синим, III – красным, а IV имеет желтую полоску.

Перед переливанием нужно визуально оценить ее качество: кровь, подходящая для переливания сверху желтоватая (слой плазмы), а внизу — темно – красная, собственно осадок из эритроцитов.

Однако, если в пакете видны сгустки, хлопья или пленки, а так же если плазма розовая (признак гемолиза), то такую кровь нельзя использовать.

Контрольное установление группы крови донора проводят после полного размораживания пакета. Каплю для анализа берут не из основного, а из маленького дополнительного отсека пакета. Методика определения аналогична таковым при определении у реципиента.

Результаты контрольного определения должны совпасть с информацией на флаконе. После успешного контрольного определения, приступают к выполнению проб на совместимость.

Наблюдение за больным после переливания крови

После переливания крови больной в
течение 2 ча­сов соблюдает постельный
режим под наблюдением лечащего врача,
дежурного врача и медсестры. В это время
производится особенно тщательное
наблюде­ние за состоянием больного:
оценивается наличие жалоб, изменение
общего состояния, каждый час из­меряется
температура тела, частота пульса и
артериальное давление

Эти данные
фиксируются в исто­рии болезни.
Необходимо также макроскопически
оценить первую порцию мочи, обращая
внимание на ее окраску. После переливания
крови под наркозом на операционном
столе следует вывести мочу кате­тером
и также оценить ее макроскопически

На
сле­дующий день обязательно выполняются
клиничес­кие анализы крови и общий
анализ мочи.

Проба на выявление неполных антител

Ранее именовалась «Проба на совместимость
по Rh-фактору»,«Тепловая проба».

Может осуществляться несколькими
способами. Наиболее чувствительной
является непрямая проба Кумбса. Однако
ее выполнение достаточно сложно, требует
специального реактива (антирезусная
сыворотка) и значительного времени
(около 2 часов). Вследствие этого проба
Кумбса выполняется только в условиях
лаборатории по специальным показаниям,
для индивидуального подбора крови
«сложным» реципиентам. Несколько
уступает ей в точности, но технически
легче осуществима проба с 10% раствором
желатина на водяной бане. Проба с 33%
раствором полиглюкина технически
наиболее простая и быстрая, но и наименее
точная. Для нужд практического
здравоохранения наиболее подходящей
является проба с 10% раствором желатина
на водяной бане.

Проба на совместимость по Rh-фактору
с использованием 10% раствора желатины.

Суть реакции состоит в создании коллоидной
среды и повышенной температуры, при
которых неполные антитела адсорбируются
на молекулах желатина и взаимодействуя
с поверхностными антигенами эритроцитов,
агглютинируют их .

Проба производится в пробирках при
температуре + 46-48ºС в течение 10 — 15 мин.
На дно пробирки, соответственно
обозначенной, помещают 1 каплю эритроцитов
донора, затем в нее добавляют 2 капли
сыворотки больного и 2 капли подогретого
до разжижения 10% раствора желатина.
Раствор желатина перед употреблением
необходимо тщательно просмотреть. При
помутнении или появлении хлопьев
желатина непригодна. Содержимое пробирки
перемешивают путем встряхивания и
помещают на водяную баню при температуре
+ 46-48ºС на 10 — 15 минут или в термостат при
той же температуре на 30 мин. Затем в
пробирку добавляют в нее 5-8 мл изотонического
раствора хлорида натрия, перемешивают
содержимое путем 1 — 2 кратного перевертывания
пробирки и просматривают на свет
невооруженным глазом или через лупу.

Наличие агглютинации в виде взвеси
мелких, реже — крупных комочков на фоне
просветленной или полностью обесцвеченной
жидкости означает, что кровь донора
несовместима с кровью больного и не
может быть ему перелита.

Если содержимое пробирки остается
равномерно окрашенным, слегка опалесцирует
в ней не наблюдается агглютинации
эритроцитов, то кровь донора совместима
с кровью больного в отношении резус-фактора
Rh (D).

NB! В Инструкции
2002 г. по сравнению с предшествовавшими
инструктивными документами в технику
постановки пробы с 10% желатином на
водяной бане внесены изменения.
Ранее время пребывания на водяной бане
было 10 мин., в новой Инструкции – 15 мин.
Введено использование термостата вместо
водяной бани.

Проба на совместимость по Rh-фактору
с использованием 33% раствора полиглюкина.

Суть пробы та же, что и предыдущей, но
исключен температурный фактор.

Проба проводится в пробирке без подогрева
в течение 5 мин. На дно пробирки,
предварительно обозначенной, вносят 2
капли сыворотки больного, 1 каплю
донорской крови
и 1 каплю 33% раствора
полиглюкина, специально выпускаемого
для этой цели во флаконах по 5 мл.
Содержимое пробирки перемешивают путем
встряхивания, затем пробирку наклоняют
до почти горизонтального уровня и
медленно поворачивают таким образом,
чтобы содержимое пробирки растеклось
по стенкам. Эту процедуру продолжают в
течение 5 мин. Затем в пробирку доливают
3-4 мл изотонического раствора хлорида
натрия, перемешивают путем 2-3 кратного
плавного перевертывания пробирки,
закрыв ее пробкой и просматривают на
свет невооруженным глазом.

При наличии в растворе агглютинатов на
фоне просветленной или полностью
обесцвеченной жидкости дается заключение
о том, что кровь донора несовместима с
кровью больного и не может быть ему
перелита. Если содержимое пробирки
остается равномерно окрашенным, без
признаков агглютинации, то дается
заключение о совместимости крови
больного и донора по Rhо(D) фактору.

Проба на индивидуальную совместимость эритроцитов донора и сыворотки реципиента по системе ав0

Проба
на индивидуальную совместимость
проводится на плоскости при комнатной
температуре, учет реакции через 5 минут.

Для
исследования используют белую пластину
со смачиваемой поверхностью, на пластине
пишут фамилию, инициалы и группы крови
больного, а также ФИО, группу крови
донора и номер
флакона с кровью. На
пластину наносят 2-3 капли сыворотки
больного, а затем стеклянной чистой
сухой палочкой переносят маленькую
каплю крови донора в соотношении 1 : 10 (
маленькую каплю крови берут из большой,
которую предварительно спускают из
флакона через иглу на бортик пластины),
кровь перемешивают с сывороткой сухой
стеклянной палочкой, слегка покачивают
пластину, затем оставляют на 1-2 минуты
в покое и снова покачивают, наблюдая за
ходом реакции. Окончательный учет
проводят через 5 минут от начала реакции.

Если в
смеси сыворотки больного и крови донора
наступила агглютинация в виде мелких,
затем укрупняющихся конгломератов, а
жидкость почти полностью обесцвечивается,
это означает несовместимость крови
донора и реципиента. Кровь донора не
может быть перелита данному больному.

При
несовместимости крови донора и реципиента
по системе АВО обычно реакция агглютинации
наступает в течение первой минуты, но
при слабо выраженных антигенах (типа
А2)
агглютинация, наступает значительно
позже, поэтому реакцию нужно учитывать
через 5 минут.

Если
агглютинации по истечении 5 минут нет,
жидкость остается равномерно окрашенной,
то это означает совместимость крови
донора и реципиента. Она может быть
перелита больному.

При
некоторых заболеваниях, сыворотка
больного приобретает способность
вызывать неспецифическое склеивание
эритроцитов в «монетные столбики»,
похожие на агглютинаты, что затрудняет
чтение реакции при определении
совместимости крови донора и реципиента.
В таких случаях следует повторить
определение групповой принадлежности
крови донора и больного. Если на этом
этапе ошибки нет, и кровь донора выбрана
правильно, то далее повторяют пробу на
индивидуальную совместимость. Результат
реакции в этом случае учитывают под
микроскопом при подогревании и добавлении
физиологического раствора. Если при
добавлении 1-2 капель. Физиологического
раствора и подогревании до 37°С «монетные
столбики» расходятся и эритроциты
располагаются в виде гомогенной массы,
то кровь донора и реципиента можно
считать совместимой в отношении групп
крови системы АВО.

Какие пробы на совместимость делают перед процедурой?

Прежде чем приступать к гемотрансфузии, необходимо выявить группы крови реципиента и донора. Для получения достоверных сведений проводят специальные тесты.

Биологическая проба – важнейший этап, он должен проводиться первым. Анализ делается исключительно врачом. Алгоритм действий:

  • медик подсоединяет к пациенту капельницу и медленно вводит до 20 мл донорского биоматериала;
  • после трансфузия прекращается;
  • в течение следующих 5 минут медик наблюдает за состоянием пациента.

Специалисты предупреждают, что вливать донорскую кровь с большой скоростью нельзя, желательно, чтобы в минуту пациенту закачивали не больше 70 капель.

Проба по резусу

Методика также относится к стандартной, может осуществляться 2 способами.

При первом применяется центрифуга, в пробирку помещают 2 капли крови пострадавшего и каплю донорского материала. Полученные вещества смешивают и добавляют к жидкости каплю 33% декстрана. Затем полученный раствор обрабатывается в центрифуге на протяжении 5 минут.

Второй допустимый способ оценки совместимости – тепловая проба. В стеклянной емкости смешивается донорская и кровь пациента, затем добавляется 2 капли разогретого желатина. В течение 10 минут раствор держат над паровой баней при температуре около 45 градусов, затем добавляет 5 мл физраствора. Оценка результата проводится аналогичным образом.

Перед переливанием обязательно проводят контрольную проверку на совместимость. У предполагаемого донора берут около 5 миллилитров крови, помещают в аппарат и добавляют специальную сыворотку (одну каплю). Затем капают туда несколько капель крови реципиента и каплю раствора натрия хлорида. После этого ведется наблюдение. Если склеивание эритроцитов не началось, значит, у донора и реципиента совместимость, и можно приступать к переливанию.

Еще один из способов проверки на совместимость заключается во введении пациенту нескольких миллилитров донорской крови. После этого за ним наблюдают три минуты. Если за это время ничего не произошло, вводят еще небольшое количество. Только убедившись в совместимости, медики приступают к процедуре переливания. Чтобы свести к минимуму возможность осложнений, реципиенту переливают лишь необходимые клетки, но не цельную кровь.

Существует довольно распространенный способ определения подходящего донора. Для этого берут до 5 мл крови из вены помещают в специальный аппарат с центрифугой и капают каплю специальной сыворотки. После этого туда же добавляют еще несколько капель крови реципиента и в течение пяти минут наблюдают происходящие действия. Так же туда еще необходимо добавить одну каплю изотонического раствора хлорида натрия.

Если за все время реакции не произошло агглютинации, то наблюдается совместимость групп выбранной крови. Таким образом, донор может сдавать кровь в нужном количестве. Еще известен контрольный способ проверки на совместимость переливания. Для этого реципиенту вводят несколько миллилитров крови на три минуты, если все идет хорошо и никаких побочных действий не наблюдается, то можно добавить еще немного.

Проводят забор крови из вены в объёме 5 мл, вливают в спец. медицинскую центрифугу, добавляют 1 каплю стандартной сыворотки, подготовленную для теста. Туда же капают кровь реципиента, в объёме нескольких капель. Наблюдают за реакцией 5 минут. Туда же нужно капнуть 1 каплю водного раствора хлорида натрия, изотоничного плазме крови. Реакция анализируется на агглютинацию. Если агглютинации не происходит, группы крови совместимы и донор сдаёт кровь столько, сколько нужно.

Второй способ контрольный. Проводится, когда для реципиента уже есть предполагаемый донор. Суть способа заключается в том, чтобы понемногу давать реципиенту донорской крови и наблюдать за реакцией. Сначала несколько миллилитров вводится на 3 минуты, если реакции нет, добавляется ещё немного.

Проба на выявление полных антител

Ранее именовалась «Проба на индивидуальную
совместимость», «Холодовая проба».
Позволяет выявить агглютинины к антигенам
систем АВО, MNSs,Lewisи др.

Проба выполняется с сывороткой крови
реципиента, которую получают путем
центрифугирования или отстаивания
крови. Сыворотка годна к употреблению
при условии ее хранения в холодильнике
при температуре +4ºС не более 2-х дней.

На белую пластинку наносят 2-3 капли
сыворотки крови больного, к которой
добавляют в 5 раз меньшую каплю крови
или эритроцитарной массы донора (из
контейнера) — соотношение крови и
сыворотки получается приблизительно
1:10. Стеклянной палочкой с оплавленным
концом перемешивают кровь с сывороткой,
затем пластинку покачивают в течение
5 мин., наблюдая за ходом реакции. По
истечении указанного времени в реагирующую
смесь рекомендуется добавить 1-2 капли
физиологического раствора для ликвидации
«ложной агглютинации».

Отсутствие агглютинации свидетельствует
о совместимости крови донора и реципиента,
а появление агглютинации указывает на
их несовместимость и недопустимость
переливания этой крови.

Осуществление гемотрансфузии

Флакон с переливаемой кровью должен
находить­ся при комнатной температуре
в течение 30 — 40 ми­нут, в экстренных
случаях его подогревают до 37° С в водяной
бане под контролем термометра. Тради­ционно
для переливания крови применялись
различ­ные многоразовые, а также
одноразовые системы.

В настоящее время многоразовыми системами
прак­тически не пользуются.

Последовательность действий такова:
больного ук­ладывают на операционный
стол, а его руки — на при­ставкой столик
обнаженным локтевым сгибом вверх. После
этого готовят систему для переливания:
берут ампулу с консервированной кровью,
определяют ее год­ность, ориентируясь
на описанные выше признаки. Ко­нец
ампулы с фильтром поднимают вверх,
обрабаты­вают спиртом, срезают
закрывающую его резинку и надевают
стерильную длинную резиновую трубку с
иглой на конце. Затем ампулу переворачивают
и при опущенной игле срезают резинку,
закрывающую ее верхний конец. Кровь,
заполняя систему, трубку и иглу, вытесняет
воздух и начинает выливаться через
иглу. Когда из системы выйдет весь
воздух, резиновую труб­ку зажимают.
Затем пациенту накладывают на плечо
жгут и обрабатывают спиртом кожу
локтевого сгиба, выбрав вену для пункции,
вводят туда иглу. Ампулу поднимают,
снимают жгут с плеча больного и присту­пают
к переливанию крови. Первые 25 мл
перелива­ют медленно, т. е. ампулу не
поднимают высоко, на­блюдая при этом
за самочувствием больного. Если не
обнаруживается признаков биологической
несовмес­тимости, ток крови усиливают
поднятием ампулы.

В течение всего процесса гемотрансфузии
про­должается наблюдение за состоянием
больного: вы­ясняют жалобы, измеряют
пульс, артериальное дав­ление и
температуру тела, следят за цветом
кож­ных покровов.

После переливания следует сохранять
контей­нер или бутылку с остатками
трансфузионной сре­ды в течение двух
суток, чтобы можно было провес­ти
анализ гемотрансфузионных осложнений
в слу­чае их развития.

Определение резус-принадлежности крови (цель и способы проведения).

Цель:
установить группу крови донора или
реципиента по системе Rh,
чтобы при переливаниикрови
не возникло несовместимости.

Способ проведения:Исследуемая кровь смешивается
со стандартной сывороткой, содержащей
антитела к R-
антигену. Тщательно перемешивают.
Добавляют 2-3 мл изотонического раствора
NaCl.
Через 3 минуты проверяют наличие
агглютинации: если есть, то кровь Rh+.

69. Проба на индивидуальную
совместимость крови донора и реципиента
(цель и способ проведения).

К капле сыворотки реципиента
добавляют каплю крови донора(сыворотки
в 10 раз и более больше).Перемешивают
и оставляют на 5 минут при комнатной
температуре, при положительной пробе
кровь несовместима.

70. Проба на
резус-совместимость (цель и способы
проведения).

К 1 капле сыворотки реципиента
добавляют 1 каплю донорской крови, ставят
на водяную баню на10
минут при 46-48°С При образовании
агглютинации кровь не совместима.

71. Биологическая
проба (цель и способ проведения).

Реципиенту внутривенно
струйно переливают донорскую кровь 3
раза по 10-15 мл с интервалом3-5
минут. Наблюдают за состоянием больного,
если нет признаков реакций или осложнений
(учащение ЧСС, дыхания, отдышка,
затрудненное дыхание, гиперемия лица
и др.). При отсутствии каких-либо осложнений
вводят остальную часть крови.

72. Кровезамещающие
растворы (определение, виды). Основные
функции этих растворов.


Кровезамещающие растворы

препараты, которые могут при внутривенном
введении их в организм больного в
определенной мере заместить однуили несколько функций
крови. Они применяются для трансфузионной
терапии различных патологических
состояний.

Классификация кровезамещающих
растворов:

1-я группа:
гемодинамические
(противошоковые):
полиглюкин, реополиглюкин, желатиноль.
Применяются для лечения кровопотери,
шока, при травмах, ожогах, операциях для
восстановления гемодинамики, в том
числе микроциркуляции, для гемодилюции;

2-я группа: дезинтоксикационныедля лечения
интоксикаций различного генеза: гемодез,
полидез, применяемые для лечения
отравлений, токсикозов различно­го
происхождения, ожоговой и лучевой
болезни, для лечения токсических форм
дизентерии, гемолитической болезни
новорожденных, заболеваний печени и
почек;

3-я группа: препараты для
парентерального
белкового питания:
белковые гидролизаты, гидролизат
казеина, гидролизин, аминопептид,
аминокровин, смеем аминокислот и др.,
применяемые для лечения белковой
недостаточности, развивающейся при
различных тяжелых заболеваниях и в
послеоперационном периоде.

4-я группа:
осмодиуретические
вещества:
близки к кровезамещающим растворам
регуляторы водно-солевого обменаи кислотно-основного
состояния, обладающие дегидратационным
действием, а также осуществляющие
коррекцию состава крови (растворы
многоатомных спиртов: маннитола и
сорбитола).

5-я группа: гемокорректоры
кровезаменители,
моделирующие
дыха­тельные функции крови, а также
служат переносчиками газов крови:1. Растворы гемоглобина
(Россия. США).2. Эмульсии
фторуглеродов (Россия, США, Япония).Подобные препараты находятся
в настоящее время в стадии разработки
и испытаний и еще не получили широкого
применения в клинике.

В настоящее время
разрабатываются растворы, сочетающие
различные лечебные свойства крови. Это
комплексные полифункциональные
кровезаме­нители,
обладающие
расширенным диапазоном действия (6-я
группа): раство­ры гемодинамического
и дезинтоксикационного действия,
растворы гемодинамического и
гемопоэтического действия, растворы
гемодинамического и реоло­гического
действия.

Исходя из широких показаний
к переливанию кровезамещающих раство­ров,
выделяют их основные лечебные функции:

  1. заполнение кровяного русла, обеспечивающее
    восстановление и иол-держание на
    нормальном постоянном уровне нарушенного
    в результате кровопотери или шока АД;

  2. освобождение организма от токсинов в
    случае отравления токсиче­скими
    веществами;

  3. обеспечение доставки питательных
    белковых веществ всем органам и тканям
    организма.

1.84. Стандарт «Подготовка пациента и медицинского инструментария к проведению плевральной пункции (плевроцентеза, торакацентеза)».

Цель:
диагностическая: исследование характера
плевральной полости; лечебная: введение
в полость лекарственных средств.

Показания:
травматический гемоторакс, пневмоторакс
спонтанный клапанный пневмоторакс,
заболевания органов дыхания (крупозная
пневмония, плевриты, эмпиема легких,
туберкулез, рак легких и т.д.).

Противопоказания:
повышенная кровоточивость, заболевания
кожи (пиодермия, опоясывающий лишай,
ожоги грудной клетки, острая сердечная
недостаточность.

Приготовьте:
стерильные: ватные шарики, марлевые
салфетки, пеленки, иглы для в/к и п/к
инъекций, иглы для пункции длиной 10 см
и диаметром 1 — 1,5 мм, шприцы 5, 10, 20, 50 мл,
пинцеты, 0,5 % раствор новокаина, 5 %
спиртовый раствор йода, спирт 70 %, зажим;
клеол, лейкопластырь, 2 рентгенограммы
грудной клетки, стерильная емкость для
плевральной жидкости, емкость с
дезраствором, направление в лабораторию,
набор для оказания помощи при
анафилактическом шоке, перчатки, КБУ.

Алгоритм действия:

  1. Проинформируйте
    пациента о предстоящем исследовании
    и получите его согласие.

  2. Усадите пациента,
    раздетого по пояс, на стул лицом к его
    спинке, попросите его одной рукой
    опереться на спинку стула, а другую (со
    стороны локализации патологического
    процесса) завести за голову.

  3. Попросите пациента
    слегка наклонить туловище в сторону,
    противоположной той, где врач будет
    проводить пункцию.

  4. Плевральную
    пункцию проводит только врач, медсестра
    ему ассистирует.

  5. Проводите
    деконтаминацию рук на гигиеническом
    уровне, обработайте их кожным антисептиком,
    наденьте перчатки.

  6. Обработайте
    предполагаемое место прокола 5 % спиртовым
    раствором йода, затем 70 % раствором
    спирта и снова йодом.

  7. Подайте врачу
    шприц с 0,5 % раствором новокаина для
    проведения инфильтрационной анестезии
    межреберных мышц, плевры.

  8. Прокол делают в
    VII — VII межреберьях по верхнему краю
    нижележащего ребра, так как по нижнему
    краю ребра проходит сосудисто-нервный
    пучок и можно повредить межреберные
    сосуды.

  9. Врач вводит
    пункционную иглу в плевральную полость
    и откачивает содержимое в шприц.

  10. Подставьте емкость
    для извлекаемой жидкости.

  11. Выпустите содержимое
    шприца в стерильную банку (пробирку)
    для лабораторного исследования.

  12. Подайте врачу
    шприц с набранным антибиотиком для
    введения в плевральную полость.

  13. После извлечения
    иглы место прокола обработайте 5 %
    спиртовым раствором йода.

  14. На место прокола
    наложите стерильную салфетку, зафиксируйте
    лейкопластырем или клеолом.

  15. Проведите
    тугое бинтование грудной клетки
    простыней для замедления экссудации
    жидкости в плевральную полость и
    предупреждения развития коллапса.

  16. Снимите перчатки,
    вымойте руки и осушите.

  17. Использованные
    одноразовые шприцы, перчатки, ватные
    шарики, салфетки положите в КБУ,
    пункциональную иглу в емкость с
    дезраствором.

  18. Следите за
    самочувствием пациента, состоянием
    повязки, подсчитайте ему пульс, измерьте
    АД.

  19. Сопроводите
    пациента в палату на каталке, лежа на
    животе.

  20. Предупредите
    пациента о необходимости соблюдать
    постельный режим в течение 2-х часов
    после проведенной манипуляции.

  21. Отправьте полученный
    биологический материал на исследование
    в лабораторию с направлением.

Примечание:

— при извлечении
из плевральной полости одномоментно
более 1 литра жидкости велика опасность
возникновения коллапса;

— доставка плевральной
жидкости в лабораторию должно быть
осуществлена безотлагательно во
избежение разрушения ферментов и
клеточных элементов;

— при попадании
иглы в плевральную полость появляется
ощущение «провала» в свободное
пространство.

Рейтинг автора
5
Материал подготовил
Максим Иванов
Наш эксперт
Написано статей
129
Ссылка на основную публикацию
Похожие публикации